Donnons un sens à l'innovation

Méta-plateformes

Le lab­o­ra­toire est équipé de trois Méta-Plate­formes thé­ma­tiques dédiés aux actions de for­ma­tion, de recherche et de val­ori­sa­tion basées sur les exper­tis­es du lab­o­ra­toire dans le domaine de la San­té. Ces méta-plate­formes se décli­nent en plate­formes tech­niques et équipements asso­ciés. Une charte com­mune des plate­formes et des équipements de BMBI présente les con­di­tions d’utilisation et d’accès ain­si que les oblig­a­tions à respecter con­cer­nant les pub­li­ca­tions et con­fi­den­tial­ité des résul­tats. Cer­tains équipements et PF sont ouverts à des presta­tions de ser­vice.

CARMOD : Caractérisation et modélisation des systèmes biomécaniques et signaux électrophysiologiques

Responsable : Jérémy Laforêt

La méta-plate­forme CARMOD fédère un ensem­ble de plate­formes tech­nologiques com­plé­men­taires dédiées à la car­ac­téri­sa­tion et mod­éli­sa­tion des sys­tèmes bio­mé­caniques et sig­naux électrophysiologiques.

Elle rassem­ble des exper­tis­es cou­vrant les dif­férentes échelles : du nanométrique à l’or­gane entier in vivo, les dif­férentes modal­ités de car­ac­téri­sa­tions et la mod­éli­sa­tion physique et numérique.

La méta-plate­forme est con­sti­tuée des plate­formes suivantes :

Responsables : JELLALI Rachid – DUPONT Claire

La plate­forme Car­ac­téri­sa­tion des écoule­ments phys­i­ologiques dis­pose de tech­niques et d’équipements per­me­t­tant de car­ac­téris­er et de mod­élis­er in vit­ro et in sil­i­co les écoule­ments phys­i­ologiques de l’échelle de la cel­lule au corps entier. Elle per­met d’étudier et de met­tre au point des tech­niques thérapeu­tiques endovas­cu­laires inno­vantes en repro­duisant les inter­ac­tions fortes entre écoule­ment et défor­ma­tion des mod­èles des struc­tures biologiques.

Équipements significatifs :

  • Codes d’analyse inverse
  • Rheome­tre Thor­labs (Anton Paar)
  • Banc d’expérimentation pour la mod­éli­sa­tion car­diaque (Viv­it­ro)
  • Par­ti­cle Image Velocime­try micro- et macro (LaV­i­sion)
  • Gran­u­lomètre (Malvern)
  • Dis­posi­tif de com­pres­sion de micro-cap­sules/mi­cro-objets
  • Vis­cosimètre (Ther­mo Fisher)
  • Dis­posi­tif expéri­men­tale pour l’études des écoule­ments à l’échelle micro : micro­scope Leica DMI8, caméra rapi­de, con­trôleurs de pres­sion et débimètres.

Responsable : DERMIGNY Quentin

La plate­forme car­ac­téri­sa­tion mécanique est implan­tée au bâti­ment D du cen­tre de recherche, elle per­met d’ef­fectuer des tests sur dif­férents types d’échan­til­lons (élas­tomères, biologiques, cap­sules, etc.) afin de déter­min­er leur pro­priété mécanique.

Équipements significatifs :

  • Chiaro (Optics11 life) Nano-indenteur
  • SYNERGIE 400 (MTS) Trac­tion / Compression
  • ELECTROFORCE 3230 (TA instru­ments) Trac­tion / Com­pres­sion / Analyse Mécanique Dynamique
  • Pla­nar Biax­i­al Test­Bench (TA instru­ments) Trac­tion / Analyse Mécanique Dynamique
  • Bio­Dy­nam­ic 5170 (TA instru­ments) Bioréac­teur / Trac­tion / Com­pres­sion / Analyse Mécanique Dynamique

Responsable : BENSAMOUN Sabine

Les méth­odes expéri­men­tales dévelop­pées per­me­t­tent de car­ac­téris­er les pro­priétés mécaniques du mus­cle murin (sain, âgé ou géné­tique­ment mod­i­fié). Ces mesures sont réal­isées à trois échelles : macro­scopique (mus­cle entier), micro­scopique (fibre) et sous-micron (myofib­rille).
Les pro­to­coles four­nissent des don­nées expéri­men­tales essen­tielles au développe­ment d’un mod­èle mus­cu­laire mul­ti­échelle. La plate­forme per­met égale­ment d’évaluer l’influence de l’échelle sur l’analyse des pro­priétés mécaniques (pas­sive, active) des mus­cles (lent, rapide).

Équipements significatifs :

  • Per­me­abi­lized Fiber Test Sys­tem (Auro­ra Sci­en­tif­ic) : salle D217
  • Mus­cle Test Sys­tem (Auro­ra Sci­en­tif­ic) : salle D217

Responsable : TRABELSI Olfa

La Tomo­gra­phie par cohérence optique OCT utilise un Inter­féromètre de Michel­son pour com­par­er la lumière réfléchie par un tis­su à un fais­ceau de référence. Les inter­férences obtenues per­me­t­tent de recon­stru­ire une image en pro­fondeur des struc­tures internes avec une très haute résolution.

L’OCT est une tech­nique d’imagerie optique non destruc­tive, elle sert à réalis­er une acqui­si­tion d’imagerie en pro­fondeur des tis­sues biologiques et per­met la visu­al­i­sa­tion de l’architecture de leur microstruc­ture tout en le con­ser­vant pour un usage postérieur tels que les essaies mécaniques.

Équipements significatifs :

  • OCT (Thor­labs)
  • Stéréo-Micro­scope Dis­cov­ery V8 (ZEISS)
  • Logi­ciel VIC-3D (Cor­re­lat­ed Solutions)

Responsable : BENSAMOUN Sabine

Des pro­to­coles d’élastographie par réso­nance mag­né­tique (ERM) sont dévelop­pés pour car­ac­téris­er in vivo des tis­sus sains (foie, mus­cle, poumon) et pathologiques (myopathie de Duchenne, fibros­es). Cette approche non inva­sive per­met un suivi per­son­nal­isé de l’évolution de la rigid­ité tis­su­laire. Elle apporte des infor­ma­tions com­plé­men­taires aux autres modal­ités d’imagerie, et per­met aux clin­i­ciens de quan­ti­fi­er les pro­priétés mécaniques des tis­sus pour ori­en­ter le choix thérapeu­tique. En par­al­lèle, l’élastographie ultra­sonore est dévelop­pée pour l’étude non inva­sive du mus­cle murin et de fan­tômes biomimétiques.

Équipements significatifs :

  • Fan­tômes : CIRS (ACRIM Poly­clin­ique Saint Côme et salle D232A)
  • Elas­togra­phie par IRM : Dis­posi­tifs MR Touch (Resoun­dant) com­pat­i­bles GE et Philips (ACRIM Poly­clin­ique Saint Côme et salle D232A)
  • Elas­togra­phie par US :  Aix­plor­er (Salle D232A)

Responsable : BOUDAOUD Sofiane / GROSSET Jean-François

La plate­forme d’analyse fonc­tion­nelle mul­ti­modale com­bine trois modal­ités majeures d’intérêt : l’électromyographie haute-den­sité (HD-sEMG), un ergomètre mul­ti-artic­u­la­tion CONTREX et plusieurs ergomètres mono-artic­u­la­tion et plusieurs échographes (portable et fixe). L’objectif est d’avoir un plateau tech­nique com­plet pour l’évaluation des capac­ités motri­ces et du sys­tème neu­ro­mus­cu­lo­tendineux selon dif­férents con­textes comme le vieillissement.

Équipements significatifs :

  • 2 x amplifi­ca­teurs REFA 128 voies (TMSi)
  • Un échographe trans­portable (Hitachi Noblus)
  • Un ergomètre mul­ti-artic­u­la­tion (CONTREX)
  • 2 ergomètres monoar­tic­u­la­tion trans­porta­bles (cheville et genou)
  • 3 machines guidées de mus­cu­la­tion du mem­bre inférieur (squat, exten­sion de jambe, mollets)

Responsables : LAFORET Jérémy – DUPONT Claire

La plate­forme « Mod­éli­sa­tion Numérique » regroupe les moyens de cal­culs mis à dis­po­si­tion des mem­bres du lab­o­ra­toire aus­si bien pour se for­mer à une nou­velle tech­nique de pro­gram­ma­tion, pour tester leurs codes avant d’u­tilis­er des cal­cu­la­teurs plus per­for­mants que pour lancer des sim­u­la­tions. Elle regroupe égale­ment les prin­ci­pales méth­odes numériques dévelop­pées au sein du laboratoire.

Équipements significatifs :

  • Mini-super­cal­cu­la­teur TuringPi2.5
  • Super­cal­cu­la­teurs NVIDIA GH200 Grace Hop­per (ARM64, GPGPU)
  • Sta­tion HP (2 Xeon E5 2665 (8 cœurs) @ 2.4Ghz, 128 Go de RAM, 3 GPU Nvidia (8Go))
  • Sta­tion Dell Pre­ci­sion 7920 (2 Xeon Gold 5220R (24 coeurs) @ 2.2–4.0 Ghz, 256 Go de RAM,Nvidia Quadro RTX4000 (8 Go))
  • Sta­tion Dell Pre­ci­sion 7920 (2 Xeon Gold 5220R (24 coeurs) @ 2.2–4.0 Ghz, 128 Go de RAM,Nvidia T400 (4 Go))
  • Mini-super­cal­cu­la­teur de table Ter­ry dévelop­pé à BMBI

Responsable : EL KIRAT Karim

Plate­forme dédiée aux nan­otech­nolo­gies appliquées à la biolo­gie, issue des pro­grammes de recherche PPF « NANOBIO » et « BIOMIM », puis du thème trans­ver­sal NanoIn­Bio de notre lab­o­ra­toire.
Elle per­met la car­ac­téri­sa­tion de la mor­pholo­gie, des pro­priétés bio­mé­caniques et des inter­ac­tions des sys­tèmes biologiques aux échelles micro et nanoscopiques.

Équipements significatifs :

  • une microbal­ance à cristal de quartz (QCM‑D)
  • un micro­scope à force atom­ique (AFM) util­is­able en mode liquide
  • un nanoin­den­teur

INGESYSBIO : Ingénierie des systèmes biologiques natifs ou reconstruits

Responsable : Ulysse Pereira

La méta-plate­forme INGESYSBIO fédère un ensem­ble de plate­formes tech­nologiques com­plé­men­taires dédiées à l’ingénierie, à la pro­duc­tion, à la cul­ture et à la car­ac­téri­sa­tion de sys­tèmes biologiques, allant des mod­èles sim­ples aux sys­tèmes biologiques complexes.

Elle rassem­ble des exper­tis­es cou­vrant l’ensemble de la chaîne expéri­men­tale, depuis la con­cep­tion et la fab­ri­ca­tion d’objets tech­nologiques et de sup­ports biologiques, jusqu’à leur mise en cul­ture, leur suivi et leur car­ac­téri­sa­tion fonctionnelle.

Grâce à cette organ­i­sa­tion inté­grée, INGESYSBIO pro­pose un envi­ron­nement tech­nologique cohérent et mutu­al­isé, favorisant l’innovation, la repro­ductibil­ité des travaux et le trans­fert des résul­tats au ser­vice des com­mu­nautés académiques et des parte­naires scientifiques.

La méta-plate­forme est con­sti­tuée des plate­formes suivantes :

(20,6 m²–132 k€ d’équipements)

Responsable : LEGALLAIS Cécile

Cette plate­forme per­met de met­tre au point et de car­ac­téris­er les com­posantes mécaniques des bioréac­teurs pour des organes arti­fi­ciels ou bioar­ti­fi­ciels (hémodial­yse, foie bioar­ti­fi­ciel, tis­su tendineux)

Financement :

  • Agence Nationale de la Recherche (ANR)
  • PEPR BTTI
  • Fon­da­tion San­telys (Tran­sidia eau)
  • Uni­ver­sité de Tech­nolo­gie de Com­piègne (UTC)
  • CNRS

Équipements :

  • Banc de car­ac­téri­sa­tion des trans­ferts en hémodial­yse (pom­pes péristal­tiques, cap­teurs de pression)
  • Bioréac­teurs MechanoCul­ture T6
  • Dif­férents types de bioréacteurs

(46.61 m²–779 k€ d’équipements)

Responsable : VIGNERON Pascale

La plate­forme est con­sti­tuée d’équipements per­me­t­tant l’analyse des échan­til­lons biologiques : expres­sion de gènes, de pro­téines, analy­ses biochim­iques. Elle per­met aus­si l’accès à des équipements d’imagerie cel­lu­laire et tissulaire.

Financement :

  • CPER TECSANTÉ
  • Ligue con­tre le cancer
  • Région Hauts-de-France
  • Agence Nationale de la Recherche (ANR)
  • Uni­ver­sité de Tech­nolo­gie de Com­piègne (UTC)
  • CNRS

Équipements :

Macro­scope dig­i­tal DMS 1000 – Leica

Appareil QPCR Quant Stu­dio 5 – Applied Biosystems

Appareil QPCR Mini Opti­con – Biorad

Appareil PCR gene Amp PCR sys­tem 9700 – Applied Biosystems

DNA/RNA UV clean­er box – Biosan

Sys­tèmes élec­trophorès­es Pro­téines et ADN

Chemi­Doc XRS Imager – Biorad

Micro­scope con­fo­cal à bal­ayage laser LSM980 – Zeiss

Video-micro­scope à flu­o­res­cence Axio Observ­er 7 – ZEISS

Micro­scope à flu­o­res­cence DMI 6000 – Leica

(20,95 m²–45 k€ d’équipements)

Responsable : BAUDEQUIN Timothée

La plate­forme de fab­ri­ca­tion addi­tive héberge plusieurs tech­niques de mise en forme de bio­matéri­aux, en par­ti­c­uli­er des mon­tages d’élec­tro­spin­ning (nanofi­bres de polymère). Elle per­met ain­si le développe­ment ou la fab­ri­ca­tion en rou­tine de « scaf­folds » inno­vants, des­tinés à servir de sup­port à la cul­ture cel­lu­laire directe­ment au sein des autres plate­formes d’INGESYSBIO.

Financement :

  • Agence Nationale de la Recherche (ANR)
  • Uni­ver­sité de Tech­nolo­gie de Com­piègne (UTC)
  • La Fon­da­tion des « Gueules Cassées »
  • CNRS

Équipements :

  • Cli­ma­ti­sa­tion
  • Sor­bonne Chimique
  • 2 mon­tages d’élec­tro­spin­ning Spin­box (Bioini­cia Fluidnatek)
  • 2 Col­lecteurs rotat­ifs pour électrospinning
  • 1 émet­teur à déplace­ment latéral pour électrospinning
  • 1 émet­teur coax­i­al pour électrospinning
  • 1 généra­teur de ten­sion négative
  • 1 sys­tème d’im­agerie du cône de Taylor

(22 m²–80 k€ d’équipements)

Responsable : BLEICHER Vanessa

La plate­forme d’histologie rassem­ble les équipements néces­saires à la pré­pa­ra­tion d’échantillons tis­su­laires (fix­a­tion, pré­pa­ra­tion, inclu­sion et coupe), en paraf­fine ou au cryo­stat, ain­si qu’à la réal­i­sa­tion de col­orations histologiques.

Financement :

  • Région Hauts-de-France
  • Agence Nationale de la Recherche (ANR)
  • Uni­ver­sité de Tech­nolo­gie de Com­piègne (UTC)
  • CNRS

Équipements :

  • Sor­bonne chimique
  • Dis­trib­u­teur de paraf­fine (SELECTA®)
  • Etuve Mem­mert UN55
  • Bain-marie Ther­mofin
  • Micro­tome Leica RM 2245
  • Cryo­stat Leica CM3050S
  • Col­orations histologiques

(201 m²–910 K€ d’équipements)

Responsable : PEREIRA Ulysse

Responsable Opérationnel P2G : BLEICHER Vanessa

Responsable Opérationnel P2D :  JOSSE Alexandra

La plate­forme d’Ingénierie cel­lu­laire et tis­su­laire est dédiée à la cul­ture, la manip­u­la­tion et l’analyse de sys­tèmes biologiques sim­ples à com­plex­es, dans des con­di­tions de con­fine­ment allant du niveau de sécu­rité biologique 1 à 2 (NSB1–NSB2).

Elle com­prend 10 postes expéri­men­taux com­plets et s’étend sur une sur­face totale de 201 m² (salles expéri­men­tales et laver­ies), répar­tie sur deux sites complémentaires.

Financement :

  • CPER TECSANTÉ
  • Ligue con­tre le cancer
  • Can­céropôle Nord-Ouest
  • Région Hauts-de-France
  • Agence Nationale de la Recherche (ANR)
  • Alliance Sor­bonne Université
  • Uni­ver­sité de Tech­nolo­gie de Com­piègne (UTC)
  • CNRS

Site P2G (100 m²–530 k€ d’équipements)

  • 4 salles expéri­men­tales : 84,07 m²
  • 1 laver­ie : 16,01 m²

Ce site per­met la manip­u­la­tion d’échantillons de niveau NSB2 et est accrédité OGM C1 et C2 (n° L2-1012).

Il est dédié à des sys­tèmes allant de la cul­ture cel­lu­laire 2D à des sys­tèmes biologiques com­plex­es, notam­ment issus des plate­formes de fab­ri­ca­tion addi­tive et de bioréac­teurs et dial­yse.

Équipements :

  • Cli­ma­ti­sa­tion 20°C
  • 6 postes de sécu­rité micro­bi­ologique de type II (4 × 1,50 m et 2 × 1,80 m)
  • 6 sys­tèmes d’aspiration des déchets liquides
  • 5 incu­ba­teurs CO₂ + 1 incu­ba­teur trigaz (N₂/O₂/CO₂)
  • Cen­trifugeuse Sig­ma 3–16KL
  • Bain-marie + bain-marie à sec
  • Sys­tèmes de micro-encap­su­la­tion (jet d’air coax­i­al, Nis­co Var D)
  • 3 micro­scopes inver­sés à con­traste de phase
  • Agi­ta­teurs Stu­art SMM1
  • Cham­bre de stéril­i­sa­tion UV
  • Pousse-seringues KDS 200
  • Micropipettes
  • Bioréac­teurs (lits flu­idis­és 2 mL à 500 mL, spin­ner flasks 50 mL à 1 L, sys­tèmes dynamiques)
  • Auto­mate de biochimie INDIKO
  • Laveur de plaques
  • Lecteur Var­ioskan LUX (absorbance, flu­o­res­cence, luminescence)

Équipements – Laverie (P2G)

  • Auto­clave HCM
  • Four Poupinel
  • Laveur Miele
  • Sys­tème de purifi­ca­tion d’eau (osmosée déion­isée, Milli‑Q)
  • Enceinte de pesée sécurisée (Safetech T1) + bal­ances de précision
  • pH-mètre

Site P2D (101 m²–380 k€ d’équipements)

  • 3 salles expéri­men­tales : 80,16 m²
  • 1 laver­ie : 21,64 m²

Ce site per­met la manip­u­la­tion d’échantillons de niveau NSB1 et NSB2.
Il con­stitue un out­il mutu­al­isé pour des équipes impliquées dans des pro­jets inté­grant des sys­tèmes com­plex­es, notam­ment issus de la plate­forme de micro-fab­ri­ca­tion et micro-flu­idique.

Équipements – Salles expérimentales (P2D)

  • Cli­ma­ti­sa­tion 20°C
  • 4 postes de sécu­rité micro­bi­ologique de type II (3 × 1,50 m et 1 × 1,80 m)
  • 3 incu­ba­teurs CO₂ + 1 incu­ba­teur trigaz 230 L (N₂/O₂/CO₂)
  • Cen­trifugeuse réfrigérée Sig­ma
  • 2 micro­scopes inver­sés à con­traste de phase
  • Bain-marie + bain-marie à sec
  • 4 pom­pes Ismatec 24 canaux
  • Lecteur Tecan Spark 10 (absorbance, flu­o­res­cence, luminescence)

Équipements – Laverie (P2D)

  • Auto­clave Lequeux
  • Four Poupinel
  • Laveur Miele
  • Sys­tème de purifi­ca­tion d’eau Direct‑Q 3 UV

Équipements (stockages froids communs)

  • Cham­bre froide
  • Con­géla­teur à rampe de tem­péra­ture con­trôlée Cry­omed (34 L)
  • Surgéla­teur PHCBI −150 °C
  • 2 surgéla­teurs −80 °C
  • Con­tain­er de cry­ocon­ser­va­tion Loca­tor Ther­molyne 4 Plus

(40,45 m²–320 k€ d’équipements)

Responsable : JELLALI Rachid

La plate­forme de micro-fab­ri­ca­tion et micro-flu­idique dis­pose de tech­niques et d’équipements per­me­t­tant la fab­ri­ca­tion et la car­ac­téri­sa­tion de dis­posi­tifs à l’échelle micrométrique, tels que des sys­tèmes microflu­idiques ou des sur­faces microstruc­turées. Elle est égale­ment équipée pour l’exploitation de ces dis­posi­tifs, notam­ment pour des appli­ca­tions en cul­ture cel­lu­laire et en étude des écoulements.

Financement :

  • CPER TECSANTÉ
  • Can­céropôle Nord-Ouest
  • Région Hauts-de-France
  • Agence Nationale de la Recherche (ANR)
  • ERC Mul­ti­phys­Mi­cro­Caps
  • Uni­ver­sité de Tech­nolo­gie de Com­piègne (UTC)
  • CNRS

Équipements :

  • Sys­tème de pho­tolith­o­gra­phie laser Dilase 250 (Kloé)
  • Pro­filomètre optique Bruk­er con­tour GT (Bruk­er)
  • Spin coater ASIXX S T20 (Osiris)
  • Imp­ri­mante 3D Asi­ga Max X 27 (Asi­ga)
  • Masqueur à LED-UV – UV-KUB 2 (Kloé)
  • Micro­scope épi­flu­o­res­cence Leica DMI8
  • Plas­ma clean­er (Har­rick)
  • Equipements pour la per­fu­sion de sys­tèmes microflu­idiques : pom­pes péristal­tiques, pouss­es seringues, con­trôleurs de pres­sion, débit­mètres, compresseurs.

TecMovE : Technologie du Mouvement et E‑santé

Responsable : Théophile Cocquerez

La Méta-plate­forme Tec­MovE est un sup­port tech­nologique pour la thé­ma­tique de recherche de l’Axe Bio­MovE qui porte sur le développe­ment de mod­èles et de solu­tions per­me­t­tant de suiv­re et d’analyser chez l’Homme et/ou l’animal les capac­ités physiques, et l’état de san­té dans un objec­tif de bien vivre et de bien vieil­lir.
Tec­MovE est conçue comme un out­il inter­dis­ci­plinaire, col­lab­o­ratif et ouvert. Elle est util­isée aus­si bien en recherche qu’en enseigne­ment et à des fins d’innovation tech­nologique.
Ses appli­ca­tions cou­vrent des domaines var­iés : recherche clin­ique, ergonomie, indus­trie, géron­tech­nolo­gie, mon­i­tor­ing, activ­ité physique, etc.

La méta-plate­forme est con­sti­tuée des plate­formes suivantes :

Responsable : ZALC Vincent

La plate­forme Out­ils bio­médi­caux con­nec­tés (eBio­Med) est implan­tée au Cen­tre d’innovation de l’UTC (salle 02–28) depuis 2014. Elle a été conçue sous la forme d’un espace de pre­mière éval­u­a­tion d’outils pou­vant être util­isés à domi­cile pour le suivi de l’état de san­té des per­son­nes. Cette plate­forme simule un apparte­ment con­sti­tué d’un séjour, d’un coin cui­sine, d’une cham­bre et d’une salle d’eau. eBio­Med est instru­men­tal­isée avec des cap­teurs du com­merce pou­vant être cou­plés avec des cap­teurs spé­ci­fiques dévelop­pés en interne ou par des entre­pris­es parte­naires.
La plate­forme eBio­Med a été impliquée dans de nom­breux pro­jets de recherch­es, tant nationaux qu’européens, inclu­ant des :

  • Pro­jets col­lab­o­rat­ifs européens (SafePregnancy@Home) ;
  • Pro­jets ANR (ESWALLHOME) ;
  • Pro­jets FUI (COCAPS)
  • Pro­jets prospec­tifs (PREDECO)
  • Thès­es CIFRE avec des parte­naires comme FIPSICO, Home­Ha­bilis, KickMaker

La plate­forme eBio­Med regroupe dans un espace de type apparte­ment un ensem­ble d’outils et de sys­tèmes de mesures de paramètres phys­i­ologiques et d’activités per­me­t­tant d’étudier les activ­ités et l’état de san­té d’une per­son­ne à domi­cile dans tach­es de la vie courante.

Équipements :

  • Cap­teurs de mou­ve­ment de type infrarouge filaires et sans fils
  • Con­tacts de porte et de fenêtres
  • Des caméras réseau
  • Des sys­tèmes embar­qués de type Rasp­ber­ry PI
  • Sta­tion météo
  • Serveur de don­nées NAS

Responsable : COCQUEREZ Théophile

La plate­forme Tech­nolo­gie Sport San­té est implan­tée au Cen­tre d’innovation de l’UTC (salle 01–22). Conçue comme un out­il inter­dis­ci­plinaire, col­lab­o­ratif et ouvert, elle est dédiée à l’étude de la bio­mé­canique du mou­ve­ment. Elle est util­isée aus­si bien pour des activ­ités de recherche, d’enseignement et d’innovation tech­nologique. Ses appli­ca­tions cou­vrent des domaines var­iés : recherche clin­ique, ergonomie, indus­trie, géron­tech­nolo­gie, per­for­mance sportive, etc.
La plate­forme TSS a été impliquée dans de nom­breux pro­jets de recherch­es d’envergure, tant nationaux qu’européens, inclu­ant des :

  • pro­jets col­lab­o­rat­ifs européens (PAMAP, Cog­ni­to, MySpine) ;
  • pro­jets ANR (Man­darin, CAPT-ESE) ;
  • pro­grammes d’excellence (FACILE, GeAc­mus, dans le cadre de l’IDEX Sor­bonne Universités) ;
  • Pro­jets investisse­ment d’Avenir (EQUIPEX FIGURES)
  • pro­jets régionaux (Ves­ta, Silkn­erve, Face­Mo­cap, TAGE) ;
  • pro­jets prospec­tifs (Chronos-IUIS).
  • Pro­jets indus­triels (ErgoSkel, Japet, ErgoTrac)

La plate­forme TSS regroupe un ensem­ble d’outils et de sys­tèmes de mesures per­me­t­tant d’étudier la ciné­ma­tique et dynamique artic­u­laire ain­si que dif­férents paramètres phys­i­ologiques en exploitant des sig­naux issus de sys­tèmes optoélec­tron­iques, de dynamomètres, de cen­trales iner­tielles, d’électrodes EMG, d’imagerie échographique, …

Équipements :

  • Sys­tème de cap­ture du mou­ve­ment optoélec­tron­ique, Vicon 16MP
  • Sys­tème de cap­ture de mou­ve­ment optoélec­tron­ique Nomades, Vicon Bonita
  • Sys­tème de cap­ture de mou­ve­ment par ultra­son Nomades, Zebris
  • Plate­formes de force, AMTI, Kistler
  • Sys­tème de cen­trales iner­tielles IMU, ADPM, Xsens
  • Sys­tème Sig­naux Élec­tromyo­gra­phie, Cometa, Delsys
  • Sys­tème impédancemètre
  • Sys­tème d’analyse des échanges gazeux, Cosmed K5
  • Ergomètres : Cyclus2, Tapis de cours­es, genou, cheville,…
  • Imagerie par échogra­phie, Hitachi Noblus